濾紙酶（FPA）檢測試劑盒(分光光度法50T/24S)
| 貨號 | SH0216 | 售價（元） | 780 |
| 規(guī)格 | 50T/24S | CAS號 |
- 產品簡介
- 相關產品
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貨號 |
名稱 |
規(guī)格 |
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SH0216 |
濾紙酶（FPA）檢測試劑盒(分光光度法50T/24S) |
50管/24樣 |
測定意義：
纖維素酶是由微生物產生的多組分的酶系，能水解纖維素β-1,4葡萄糖苷鍵生成葡萄糖，研究濾紙酶活力對纖維素酶的研究具有非常重要的意義。
測定原理：
濾紙酶水解濾紙產生的還原糖能與3,5-二硝基水楊酸生成紅棕色氨基化合物，在540nm處有最大光吸收，在一定范圍內反應液顏色深淺與還原糖的量成正比，可測定計算得濾紙酶的活力。
組成：
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產品名稱 |
SH0216-50T/24S |
Storage |
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試劑一：液體 |
15ml |
4℃ |
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試劑二：液體 |
40ml |
4℃ |
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濾紙條 |
50mg×50條 |
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說明書 |
一份 |
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自備儀器和用品：
天平、研缽、低溫離心機、可見分光光度計、1 ml玻璃比色皿、恒溫水浴鍋。
酶液提?。?/span>
1. 組織：按照質量（g）：蒸餾水體積(ml)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g，加入1ml蒸餾水）加入蒸餾水，冰浴勻漿后于4℃，12000rpm離心10min，取上清置于冰上待測。
2. 細胞：按照細胞數量（104個）：蒸餾水體積（ml）為500~1000：1的比例（建議500萬細胞加入1ml提取液），冰浴超聲波破碎細胞（功率300w，超聲3秒，間隔7秒，總時間3min）；然后4℃，12000rpm離心10min，取上清置于冰上待測。
3. 培養(yǎng)液或其它液體：直接檢測。
測定操作：
1. 根據樣本數量取兩倍數量的濾紙條和Ep管，每支Ep管中放入一個卷狀濾紙條（注意要放入底部），作為底物。
2. 對照管：取200μl滅活的酶液，加入500μl試劑一，充分混勻，再加入放有濾紙條的Ep管中，標注為對照管。
3. 測定管：取200μl酶液，加入500μl試劑一，充分混勻，再加入放有濾紙條的Ep管中，標注為測定管。
4. 對照管和測定管同時置于50℃水浴鍋中反應30min。
5. 加入800μl試劑二，沸水浴5min，自來水冷卻后取1ml于1ml玻璃比色皿中測定540nm處吸光值，分別記為A對照管和A測定管。
酶活性計算公式：
標準曲線：y = 0.2805x - 0.0255，R2 = 0.9991
（1）按照蛋白濃度計算
酶活性定義：在50℃，pH4.6條件下，每毫克蛋白每分鐘分解濾紙產生1mg葡萄糖所需的酶量為一個酶活力單位。
FPA（U/mg prot）=（△A+0.0255）÷ 0.2805×V反總÷（V樣×Cpr）÷T
= 0.891×（△A+0.0255）÷ Cpr
（2）按照樣本質量計算
酶活性定義：在50℃，pH4.6條件下，每克組織每分鐘分解濾紙產生1mg葡萄糖所需的酶量為一個酶活力單位。
FPA（U/g 鮮重）=（△A+0.0255）÷ 0.2805×V反總÷（W×V樣÷V樣總）÷T
= 0.891×（△A+0.0255）÷ W
（3）按液體體積計算
酶活性定義：在50℃，pH4.6條件下，每毫升培養(yǎng)液每分鐘分解濾紙產生1mg葡萄糖所需的酶量為一個酶活力單位。
FPA（U/ml）=（△A+0.0255）÷ 0.2805×V反總÷V樣÷T
= 0.891×（△A+0.0255）
（4）按細胞數量計算
酶活性定義：在50℃，pH4.6條件下，每104個細胞每分鐘分解濾紙產生1mg葡萄糖所需的酶量為一個酶活力單位。
FPA（U/104cell）=（△A+0.0255）÷ 0.2805×V反總÷（V樣×細胞數量（萬個）÷V樣總）÷T
= 0.891×（△A+0.0255）÷ 細胞數量（萬個）
V反總：反應總體積，1.5ml，V樣：反應體系中加入樣本體積，0.2ml；V樣總：加入提取液體積，1ml；Cpr：樣本蛋白濃度，mg/ml；W：樣本質量，g；T：反應時間，30min
注意事項：
1. 用干凈的鑷子取出濾紙條，帶手套卷成卷放入Ep管底部。
2. 樣本滅活時保證同一批樣本處理時間一致，建議沸水浴十分鐘。
3. 批量樣本測定之前先做1-2個樣本的預實驗，若吸光值超過1.2，建議將樣本用蒸餾水稀釋后再進行測定，計算公式中乘以稀釋倍數。
4. 顯色后取檢測液時注意槍頭不要碰到濾紙條，以免帶入毛狀物，影響測定結果。